Кокцидиостатики что это такое

Кокцидиостатики

Кокцидиостатики применяют для профилактики и лечения кокцидиоза у домашней птицы, а также в качестве добавки в корма для увеличения эффективности кормления (в дозах ниже терапевтических). Значительная их часть является ионофорами. Это органические вещества, осуществляющие перенос ионов щелочных и щёлочноземельных металлов или аммония через биологические мембраны. К ионофорам относятся такие кокцидиостатики, как Монензин, Ласалоцид, Мадурамицин, Наразин, Салиномицин и Семдурамицин. Они активны в отношении граммположительных бактерий, микобактерий, некоторых грибов и паразитов, в том числе кокцидий.

Кокцидии – это простейшие из класса апикомплексов, или споровиков. У этих организмов присутствует специальный комплекс, с помощью которого они проникают в клетки. Жизненный цикл кокцидий включает фазу споры, которая позволяет им пережить неблагоприятные условия и сохраняться в пище и кормах, а также в окружающей среде в течение нескольких лет. Большая часть кокцидий является внутриклеточными паразитами млекопитающих, а также птиц, рыб, рептилий и червей. Чаще всего они обитают в клетках эпителия кишечника, препятствуя их нормальной работе и разрушая их. Это приводит к нарушению всасывания питательных веществ, потере веса, замедлению развития, а также к диарее. Тяжелые случаи кокцидиозов часто заканчиваются гибелью животных от истощения. Помимо кишечной формы этих заболеваний существуют также легочные и мышечные кокцидиозы. К кокцидиозам относятся такие заболевания, как эймериозы, саркоспороидозы и токсоплазмоз.

Период вывода ионофоров из организма составляет 3-5 дней. Хотя применение ионофоров безопасно и эффективно в терапевтических дозах, у определенных видов животных передозировка или неправильное употребление может привести к интоксикации. Лошади, некоторые виды птиц, собаки и кошки особенно чувствительны к токсичности ионофоров. Последствия интоксикации – дегенерация мышц, невропатия, угнетение сердечной мышцы, часто летальный исход.

СТАЙЛАБ также предлагает стандарты кокцидиостатиков для анализа в соответствии с ГОСТ 54518-2011.

Смежные продукты:

Тест-системы и смежные продукты для определения микотоксинов
Тест-системы и смежные продукты для определения антибиотиков
Тест-системы и смежные продукты для определения витаминов
Анализ содержания кокцидиостатиков в кормах и пищевых продуктах

Источник

Кокцидиостатики что это такое

Случаи отравления имеют место при использовании кокцидиостатиков у животных, которым они не рекомендованы, при завышении дозы или концентрации, а также при применении их для слабых и истощенных животных. В настоящее время большинство сообщений об отрицательном действии кокцидиостатиков приходится на долю ионофорных антибиотиков.

Как и любые другие ксенобиотики (чужеродные вещества), кокцидиостатики способны оказывать отрицательное действие на здоровье людей. В организм человека кокцидиостатики могут попадать непосредственно, например, в процессе изготовления комбикорма с кокцидиостатиком, а также через животноводческую продукцию. При работе с кокцидиостатиками необходимо придерживаться обычных методов безопасности – использовать защитную одежду, перчатки, респираторы.
Все кокцидиостатики всасываются в желудочно-кишечном тракте животных и попадают в съедобные органы и ткани. Для большинства кокцидиостатиков установлены периоды ожидания, в течение которых мясопродукты, молоко, яйца непригодны в пищу человека. При плановом применении кокцидиостатиков их изымают из корма за несколько дней перед убоем. Эти сроки различны для различных веществ и видов животных. Для некоторых из них, вследствие малой токсичности и незначительного содержания в животноводческой продукции, сроки ожидания не установлены.
Для профилактики и восстановления микрофлоры кишечника животного после применения кокцидиостатиков применяют пробиотик Эмпробио®:

Источник

Ветеринария

Обзор антикокцидийных препаратов для животных

Среди паразитарных болезней животных и птицы значительная доля принадлежит кокцидиозам. Помимо кур и свиней, кокцидии поражают гусей, индеек, кроликов, норок, кошек, собак. Болезнь регистрируется также у телят, коз и овец. Профилактика кокцидиоза особенно необходима при напольном содержании бройлеров и кур яичных кроссов.

Для каждого вида животного характерен свой видовой состав возбудителей, причем заболевание могут провоцировать сразу несколько эймерий.

Кокцидии являются внутриклеточными паразитами эпителиальных клеток кишечника. В результате их деятельности слизистые кишечника разрушаются, воспаляются, в итоге нарушается всасывание питательных веществ, изменяется состав микрофлоры кишечника, что ведет к потере веса и снижению естественной резистентности организма животных. Нарушение барьерных функций слизистой оболочки кишечника приводит к попаданию в кровь животного токсических веществ. Развивается диарея, что приводит к нарушению водно-солевого баланса животного.

Мишенью для паразитов может служить не только кишечник, но и другие внутренние органы. Например, помимо кишечника, у гусей кокцидии также паразитируют в почечных канальцах, а у кроликов — и в желчных протоках печени.

В эпителиальных клетках кишечника кокцидии проходят три фазы развития. Выделение ооцист происходит с фекалиями. Благодаря двойной оболочке ооцисты кокцидий способны длительно сохраняться во внешней среде и заражать новых хозяев. Длительность спорогонии зависит от наличия определенных условий, а именно влаги, тепла и кислорода. Благодаря сложному циклу размножения (гаметогонии, шизогонии и спорогонии) кокцидии могут быстро увеличивать свою численность в миллионы раз.

Кокцидиозы протекают остро, подостро и хронически. При отсутствии своевременного лечения у молодняка наблюдается падёж.

Таким образом, кокцидиоз воздействует на пищеварительную систему животных, вызывая резкую потерю роста и веса. Основной мишенью паразитов является молодняк. В результате сохранность поголовья значительно снижается. Переболевшие животные во взрослом возрасте не способны к высокой продуктивности, ни мясной, ни яичной, ни молочной. Помимо всего они становятся источником заражения для других. Таким образом, кокцидиозы могут спровоцировать большие экономические потери в хозяйствах.

Ущерб от кокцидиоза в мировом масштабе исчисляется миллиардами долларов. Потеря прибыли складывается из снижения мясной и яичной продуктивности, падежа молодняка, дополнительных расходов по дезинфекции помещений и оборудования, а также трудовых затрат.

Потери мясной продуктивности у кур составляют по 270 г на бройлера, при этом выход цыплят первой категории снижается до 20%. В результате заболевания кокцидиозам на 15–20% увеличиваются затраты корма, при отсутствии лечения в 80–90% случаев наблюдается гибель молодняка. Экономические потери в бройлерном птицеводстве от субклинических кокцидиозов могут достигать 70%, что составляет 3–8 руб. на одного бройлера. В яичном птицеводстве, где практикуется напольное содержание молодняка, кокцидиоз также наносит значительный урон, и это не только высокий отход цыплят. По данным специалистов, у переболевших эймериозом кур-несушек не только на 10–80% уменьшается яйценоскость, но и задерживается яйцекладка, нарушается пигментация желтка.

В свиноводстве из-за кокцидиозов свиней недополучают от 10 до 30% привеса молодняка, гибель поросят в отдельных случаях может достигать 100%. Потеря прироста массы на одного больного эймериозом поросенка достигает 2,8 кг.

У годовалых телят, переболевших кокцидиозом, наблюдается снижение веса в среднем на 27 кг, в дальнейшем они имеют более низкую молочную продуктивность.

Частота встречаемости кокцидиозов

Эймериоз среди сельскохозяйственных животных широко распространен в зарубежных странах (все государства Европы, Канада, США, Мексика, Бразилия, Китай, Австралия). В этих странах неблагополучными по кокцидиозу объявлены около 85% свиноводческих хозяйств, при этом заболеваемость составляет от 33 до 36%.

В крупных животноводческих и птицеводческих комплексах кокцидиоз носит всесезонный характер, тогда как в небольших хозяйствах часто отмечаются вспышки весной и летом.

Зараженность свиней кокцидиями в отдельных хозяйствах может достигать 100%; по исследованиям ГНУ ВИГИС, в среднем по России этот показатель составляет 32,4%.

В промышленных птицеводческих хозяйствах зараженность эймериями исчисляется в зависимости от возраста птицы 45–80% и более. Наибольшая инвазивность цыплят наблюдается в возрасте 28 дней, затем она снижается. При этом вероятность заражения кокцидиями яичного молодняка выше, чем у бройлеров. Напольное выращивание яичных пород длится 100–110 дней, тогда как бройлеров — 36–38 суток. Считается, что цыплята заражаются спорулированными ооцистами эймерий в первые 10 суток после их постановки в птичники.

От кокцидий страдают как крупные, так и мелкие хозяйства. Мониторинг птицеводческих ЛПХ Московской области в 2015 г. показал, что из общего числа на долю эймериоза приходится 11,4% эпизоотических очагов и 25,8% заболевших птиц.

Меры борьбы с кокцидиозами

Повсеместному искоренению кокцидиозов в промышленном животноводстве и птицеводстве мешает ряд факторов. Среди них устойчивость ооцист во внешней среде, повсеместное распространение их с помощью животных-переносчиков (грызунов, насекомых, птиц), низкий уровень зоогигиены, носительство паразитов среди взрослых животных. Содержание животных на глубокой подстилке многократно увеличивает риск инвазии. Когда вероятность заражения кокцидиозом является высокой, рекомендуется применять антикокцидийные химиотерапевтические препараты.

В качестве компонента противококцидиозной программы у птиц возможно применение живых вакцин (например Эймериавакс 4м и Адвент от Huvepharma). Эймериавакс 4м применяется для профилактики кокцидиоза цыплят родительского стада (от 4 видов эймерий.) Вакцина Адвент назначается бройлерам промышленного стада (3 вида эймерий) при напольном содержании для восстановления чувствительности ооцист кокцидий к действию кокцидиостатиков (3 тура — вакцина, 3 тура — ионофорный антибиотик). Эта вакцина используется при производстве продукции халяль и органик, а также при невозможности исключения контаминации корма кокцидиостатиками. Вакцина Эвалон («Хипра», Испания) принадлежит к новому поколению аттенуированных вакцин против кокцидиоза, содержащих в своем составе адъювант, обеспечивающий пожизненную защиту против эймерий.

При назначении вакцин запрещено применять лекарственные препараты против кокцидиоза, а также антибиотики с антикокцидным действием (тетрациклины, сульфаниламиды и нитрофураны) за 2 дня до вакцинации и в течение 21 дня после ее окончания. Также запрещено вакцинировать птиц за 21 день до убоя. Кроме того, насыщенная схема вакцинации может создать повышенную нагрузку на иммунитет птицы. В этом случае возможно возникновение симптомов кокцидиоза, требующего немедленного лечения.

Человеческий фактор играет ключевую роль в переносе возбудителей кокцидиозов. Заражение может происходить через загрязненный инвентарь, обувь, руки, одежду. Гигиена персонала и создание санитарных зон доступа — важнейшая часть биозащиты предприятия.

К биологическим мерам борьбы также можно отнести содержание цыплят, кроликов на сетчатых полах. Отмечено, что восприимчивость к кокцидиозам провоцирует снижение иммунитета на фоне перенесенных инфекций, потребление корма с высоким уровнем микотоксинов, недостаточная вентиляция, скученное содержание. Основным источником возбудителей является загрязненная подстилка.

Традиционные дезинфицирующие растворы (формалина, креолина, кальцинированной соды, хлорной извести и др.) не способны уничтожить ооцисты во внешней среде. Для ликвидации ооцист необходимо увеличить температуру раствора дезинфектанта до 80°С, а также время экспозиции. В качестве перспективных препаратов для деинвазии рекомендуется применять специальные средства с поверхностно-активными веществами, направленные против споровых форм возбудителей (Кенококс Клинер, Вироцид, Сид 200, Экоцид, Неопредизан и др.)

Кокцидиостатики животным назначаются орально с комбикормом (телятам — с ЗЦМ). В случае лечения дополнительно применяются симптоматические средства. Профилактическая обработка против кокцидий проводится по определенным схемам с ротацией действующих веществ.

В Российской Федерации кокцидиостатики относятся к лекарственным препаратам.

Действие кокцидиостатиков основано не только на подавлении размножения кокцидий (истинные кокцидиостатики), но и на их уничтожение (кокцидиоциды).

Кокцидиостатики делятся на 4 группы: химические, растительные, ионофорные и комплексные. В качестве адаптогенов в состав препаратов могут входить органические кислоты и пробиотики.

Химические (синтетические) кокцидиостатики

Химические кокцидиостатики резко снижают численность кокцидий, блокируют выход паразитов во внешнюю среду. Эти препараты создают высокий уровень защиты внутренних органов животных. Однако паразиты способны достаточно быстро адаптироваться к этим веществам, причем передавать эту способность по наследству на несколько поколений вперёд. Кокцидиостатической или кокцидиоцидной активностью обладают тетрациклины, сульфаниламиды, нитрофураны и некоторые другие препараты. Согласно классификации, они относятся к противобактериальным средствам, но также активны против ряда простейших. Например, препарат Брометронид новый («Бровафарма») в качестве действующего вещества содержит тинидазол, к которому чувствительны не только простейшие, но и бактерии.

Противококцидным эффектом обладает также сера.

К химическим кокцидиостатикам относятся:

– аналоги тиамина (нарушают углеводный обмен паразита путём связывания молекулы тиамина);

– бензенацетонитрилы (механизм действия до конца не известен, предположительно заключается в нарушении переноса катионов кальция и натрия в ооцисте, что приводит к гибели кокцидий на стадии шизогонии);

– триазинтрионы (механизм действия основан на конкурентном антагонизме парааминобензойной кислоты, которая необходима кокцидиям для синтеза фолиевой кислоты);

– пиридинолы или оксипиридины (представляют собой структурный фрагмент витамина В ₆ );

– карбанилиды (воздействуют на энергетический обмен через фермент трансгидрогеназу и АТФ);

– производные гуанидина (предотвращает формирование зрелых шизонтов);

– хиназолины (точный механизм действия неизвестен, предполагается, что они действуют в основном на свободные стадии развития паразита).

Некоторые химические кокцидиостатики импортного и отечественного производства

Источник

Кокцидиостатики: золотое правило ротации

Татьяна ТИТОВА, кандидат ветеринарных наук ВНИВИП — филиал ФНЦ ВНИТИП РАН
Сергей ОРЛОВ, технический специалист подразделения по работе с ключевыми клиентами (птицеводство) ООО «Зоэтис»

Кокцидиоз — болезнь сельскохозяйственной птицы, вызываемая простейшими рода Eimeria и протекающая в виде энзоотий с поражением кишечника. Несмотря на успехи в таких областях науки, как биотехнология, иммунология и генетика, заболевание остается одной из наиболее распространенных патологий в бройлерном и яичном птицеводстве во всем мире.

Экономические потери от кокцидиоза, по оценкам экспертов, составляют 0,8–1,5 млрд долл. в год. Это обусловлено гибелью птицы, задержкой ее роста и развития, снижением продуктивности и ухудшением качества мяса, а также дополнительными затратами кормов и ветеринарных препаратов.

Для кокцидий характерна строгая видовая специфичность: невозможно заразить кур кокцидиями гусей, уток, индеек и наоборот. Для кур наиболее вирулентны E. tenella, E. necatrix, E. brunetti, E. мaxima, E. acervulina и др. В организме птицы одновременно могут паразитировать несколько видов кокцидий, различающихся по чувствительности к химиопрепаратам.

Кокцидии обладают способностью к чрезвычайно интенсивному размножению. Ооцисты весьма устойчивы к воздействию физических и химических факторов. В России на птицефабриках чаще всего регистрируют пять видов кокцидий — E. аcervulina, E. brunetti, E. maxima, E. necatrix, E. tenella.

Основное звено в системе профилактики кокцидиоза кур — применение антикокцидийных препаратов. Их история берет начало в 40-х годах прошлого столетия с новаторской публикации сотрудников государственной сельскохозяйственной станции Род-Айлендского университета, которые заявили, что предотвратить кокцидиоз кур можно путем включения в рацион химических веществ в низких концентрациях.

В последующие годы было разработано, изучено и внедрено много новых эффективных антикокцидийных средств. В то же время появилось немало сообщений о выделении различных видов кокцидий, устойчивых к сульфаниламидам, нитрофуранам, метилхлорпиндолу, ампролиуму и другим соединениям. В 1980-х гг. выделили резистентные к ионофорным антибиотикам культуры кокцидий.

Один из способов предупреждения развития лекарственной устойчивости кокцидий — постановка теста на чувствительность полевого изолята к антикокцидийным препаратам. Эта методика характеризуется прогностической информативностью и позволяет скорректировать программу профилактических мероприятий на конкретном птицеводческом предприятии.

Исследования проводили на цыплятах-бройлерах (возраст — 14 суток), приобретенных в хозяйстве, благополучном по инфекционным и инвазионным болезням. Молодняк содержали в виварии, кормили в соответствии с возрастом. Использовали антикокцидийные препараты (аналоги пиримидина, производные алкалоидов и гуанидина, полиэфирные ионофорные антибиотики).

Из биологического материала, полученного на разных птицеводческих предприятиях нашей страны, по общепринятым методикам выделяли, очищали и размножали культуры кокцидий. Их видовой состав определяли по морфологическим и биометрическим признакам ооцист и патоморфологическим изменениям кишечника зараженной птицы. Спорулированные ооцисты хранили в холодильнике при температуре 2–4 °С в 2,5%-м растворе калия двухромовокислого.

В ходе эксперимента птицу разделили на группы по 5–6 голов в каждой. Корм смешали с антикокцидийными препаратами в дозах, указанных в инструкции по применению, и за сутки до заражения скормили цыплятам. Особей первой контрольной группы не инфицировали, второй контрольной — инфицировали, но препарат не давали. Птица опытных групп потребляла корм с антикокцидийным препаратом в течение десяти дней.

В начале и в конце опыта цыплят взвешивали, чтобы определить среднюю массу каждого из них. Наблюдения вели на протяжении всего опыта, при этом отмечали клинические проявления эймериоза и учитывали результаты патолого-анатомического вскрытия павшей птицы.

Антикокцидийную активность изучаемых препаратов оценивали по методике М. В. Крылова с использованием данных по летальности и приросту живой массы цыплят в разных группах.

Результаты опыта показали, что при противококцидийном индексе (ПКИ) менее 120 баллов и падеже свыше 20% у возбудителя сформировалась высокая резистентность к препарату, а при ПКИ 120–160 баллов и падеже до 20% — частичная. При ПКИ 160–200 баллов и отсутствии падежа признаков адаптации к препарату не выявили.

При исследовании биологического материала, взятого от цыплят-бройлеров в возрасте 21–40 суток, выделили кокцидии E. acervulina, E. maxima и E. tenella, представленные моновидовыми и поливидовыми культурами (фото 1 и 2).

Фото 1. Культура E. acervulina (окулярх10, объективх40)

Фото 2. Смесь культур E. acervulina, E. tenella и E. maxima (окулярх10, объективх40)

На фото видно, что ооцисты E. acervulina имеют яйцевидную форму, протоплазматическая масса неспорулированных эймерий просматривается в виде шара с плавными очертаниями. На заостренном конце есть слабозаметное микропиле (отверстие в оболочке).

Ооцисты E. maxima значительно крупнее, чем ооцисты E. acervulina. Они яйцевидной (реже — овальной) формы, протоплазматическая масса в неспорулированных кокцидиях шаровидная (см. фото 2). Ооцисты E. tenella окружены двухконтурной оболочкой, которая придает им слегка зеленоватый оттенок. На одном из полюсов ооцисты имеется полярная гранула, микропиле отсутствует (см. фото 2).

Чтобы определить чувствительность моновидовой культуры кокцидий к антикокцидийным препаратам, цыплят заразили спорулированными ооцистами E. acervulina в дозе 3 млн ооцист на голову. Для оценки чувствительности поливидовой культуры кокцидий к антикокцидийным средствам цыплят инфицировали спорулированными ооцистами: E. аcervulina — в дозе 2 млн ооцист на голову, E. tenella — 0,1 млн и E. maxima — 0,1 млн. За птицей наблюдали на протяжении десяти дней.

На 4–5-е сутки бройлеры, зараженные спорулированными ооцистами моновидовой и поливидовой культур, погибли. Павшую птицу вскрыли. При этом зафиксировали патолого-анатомические изменения в желудочно-кишечном тракте. Чтобы выявить стадию развития кокцидий, исследовали образцы соскобов со слизистой оболочки пораженного кишечника (фото 3–5).

Инвазирование цыплят поливидовой культурой кокцидий стало причиной значительного поражения различных отделов кишечника. При заражении E. аcervulina и моновидовой культурой изменения в двенадцатиперстной кишке были идентичными (см. фото 3).

Фото 3. Двенадцатиперстная кишка с отложения мибляшек при инвазии E. Acervulina

Фото 4. Средняя степень поражения слепых отростков кишечника при инвазии E. Tenella

При средней степени инвазии E. tenella на слизистой слепых отростков кишечника зафиксировали кровоизлияния и небольшое количество крови в содержимом (см.фото 4).

При инвазии E. maxima поражалась средняя часть тонкой кишки. На слизистой выявили разлитые кровоизлияния. Содержимое кишечника было оранжевого цвета (см. фото 5).

Фото 5. Поражения средней части тонкой кишки при инвазии E. мaxima

Мы установили степень чувствительности моновидовых и поливидовых культур кокцидий к антикокцидийным препаратам. Результаты исследований представлены в таблице 1.

Из таблицы видно, что противококцидийный индекс варьировал от 131 (у изолята № 1, представленного поливидовой культурой, — к никарбазину + монензину) до 203 баллов (у изолята № 3, представленного поливидовой культурой, — к робенидину).

Степень резистентности полевых изолятов кокцидий отражена в таблице 2.

Из данных таблицы видно, что только изолят № 5, представленный поливидовой культурой кокцидий, чувствителен к исследованным антикокцидийным препаратам. Изолят № 3 (поливидовая культура кокцидий) оказался чувствительным к семи препаратам и частично резистентным к никарбазину + монензину. Изолят № 6 (моновидовая культура кокцидий) показал чувствительность к двум из пяти исследованных антикокцидийных препаратов. Оставшиеся три полевых изолята кокцидий, представленные как моновидовой, так и поливидовой культурами, имели частичную резистентность ко всем исследованным препаратам.

Установлено, что к никарбазину + монензину частичная резистентность была у четырех полевых изолятов из четырех протестированных, к мадурамицину — у четырех полевых изолятов из шести протестированных, к никарбазину и салиномицину — у трех изолятов кокцидий из шести протестированных, к робенидину и ласалоциду — у двух и трех изолятов соответственно из шести протестированных.

Обсуждение

Полученные нами данные по резистентности полевых изолятов кокцидий к антикокцидийным препаратам совпадают с выводами других авторов. Так, H. W. Peek и W. J.M. Landman определили чувствительность 15 изолятов кокцидий (выделены в 1996, 1999 и 2001 гг.) к монензину, наразину, салиномицину, ласалоциду, никарбазину, диклазурилу и мадурамицину.

Из четырех изолятов E. acervulina, выделенных в 1996 г., лишь один показал чувствительность к салиномицину и мадурамицину. К большинству исследованных препаратов резистентными оказались выделенные и в 1999 г. изоляты E. аcervulina. К салиномицину их чувствительность снизилась. Опыты, проведенные в 2001 г., продемонстрировали, что чувствительность полевых изолятов повысилась сразу к нескольким препаратам.

B. Stephan и группа ученых изучали чувствительность полевых изолятов кокцидий к антикокцидийным препаратам на севере Германии и установили, что девять из десяти исследованных полевых изолятов обладали резистентностью. У семи изолятов выявлена частичная или полная устойчивость к мадурамицину, у шести — к монензину, у пяти — к салиномицину, у восьми — к никарбазину. Резистентность к нескольким антикокцидийным препаратам была у семи из десяти изолятов.

Таблица 1

Чувствительность полевых изолятов кокцидий к антикокцидийным препаратам индивидуальна и характеризуется изменчивостью. Иными словами, резистентность кокцидий на разных предприятиях будет отличаться, а со временем при использовании тех или иных кокцидиостатиков ситуация изменится. Поэтому, чтобы иметь достоверные данные, исследования придется повторять.

На практике резистентность паразитов к антикокцидийным препаратам является серьезной проблемой: снижается эффективность химиотерапии и химиопрофилактики в борьбе с кокцидиозом. От того, насколько правильно решают эту задачу в хозяйстве, зависит его благополучие.

Во избежание развития резистентности кокцидий к препаратам на птицефабриках обычно разрабатывают программы ротации кокцидиостатиков. При этом учитывают следующие базовые принципы:

— не используют один отдельно взятый кокцидиостатик слишком долго;

— чередуют препараты различных классов;

— обеспечивают достаточный отдых поголовья перед повторным применением средства, что позволяет повысить его эффективность;

— химические кокцидиостатики применяют не реже одного раза в год.

В мире эти принципы получили название «Золотое правило ротации». Тем не менее очень часто в качестве ротационных партнеров используют несколько продуктов. Какой окажется лучше? Несмотря на высокую эффективность каждого из них, разница в несколько пунктов противококцидийного индекса отразится на приростах живой массы.

При выборе препаратов не стоит полагаться на интуицию. Программа ротации кокцидиостатиков, основанная на данных о чувствительности полевых изолятов кокцидий, позволяет максимально защитить поголовье от заболевания.

В ходе исследования мы смоделировали процесс воздействия полевых кокцидий на птицу и оценили эффективность каждого задействованного в опыте противококцидийного продукта.

В 2017 г. ученые ВНИВИП при участии специалистов одного из ведущих производителей антикокцидийных препаратов — компании Zoetis — провели четыре эксперимента по определению чувствительности выделенных в хозяйствах полевых изолятов кокцидий к 11 действующим веществам и их комбинациям.

Данные, полученные в ходе исследований, позволили птицеводам принять оптимальное решение: разработать программу защиты поголовья от кокцидиоза и благодаря этому достичь высоких производственных показателей.

Источник

• ← Кокцидиостатики что это такое вред для человека
• Кол архаизм что означает →